一般而言，眼底图像通常都是通过激光扫描成像进行采集，但是由于眼底可观测的视野往往是很有限的，一个患者的眼底信息需要多张扫描图像才能完全显示出来。这种局限性大大不利于病情进行全面的、细致的诊断。Tissue Cytometry全景组织流式定量分析技术进行全景图像获取，在单细胞、组织结构、细胞空间信息等多个层面进行定位、定性、定量分析。从而更好的对病变区域进行有针对性的跟踪观察和全面分析。

视网膜荧光样本中小胶质细胞胞体、神经纤维识别、血管识别、血管斑点识别、神经元与血管的距离分析。

1. 利用TissueFAXS系统进行玻片荧光的全景扫描。

2. 使用StrataQuest分析软件进行定量分析。

3. 根据FITC通道识别神经胞体并筛选出有效细胞胞体（细胞核识别算法）。

4. 膜识别FITC染色信号的区域确定神经纤维，并对不同长度神经纤维进行分类。

5. 识别血管的Texa Red染色区域面积及强度。

6. 计算神经元与血管间的空间距离，并统计数量和占比。

7. 根据毛细血管亮斑的识别结果，统计新生小血管数量。

实验过程

单通道灰阶图（↑：FITC，↓：Texa Red）

根据染色强度，染色面积，细胞形态学，利用正反向回溯功能和设门圈选Gating，排除杂质，细胞碎片，黏连细胞（绿色框线标记），获得有效的神经元胞体，（粉色框线标记），并将胞体按照面积分为两类（散点图）。

由于该视网膜样本是标记的小胶质细胞，根据面积将神经胞体分为两类（Small bodycell，Big bodycell），反向回溯Big bodycell中的细胞后，应用Input Gate功能筛选短粗的神经纤维，作为激活态的小胶质细胞。

激活态小胶质细胞识别

血管识别：根据Texa Red通道进行识别，并去除面积小的及非同一焦面的血管，仅对确定的清晰的同一焦面的大血管进行面积统计。

血管与小胶质细胞的距离0-0.1μm（红色框线标记）

血管与小胶质细胞的距离0.1-1μm（粉色标记）

血管与小胶质细胞的距离1-3μm（粉色标记）

此外，Tissue Cytometry散点图-热力图-数据同屏叠加对比功能，可以整合多种数据分析的二维图像，便于研究者们直观的对比与校验；同时结合图像同屏对比功能，不但可以同屏预览，还可以支持多点实时联动缩放，便于观察/分析图像，打通信息分析时数据-图像之间的屏障。